专利证书
主要产品
  YLS-Q11小动物解剖板
  YLS-20A控温加热垫(配聚乙烯解剖板两块)
  YLS-15A大鼠转轮式跑步机
  YLS-11A通道式鼠足支撑力测量仪
  YLS-Q8惊厥实验架
  YLS-Q7激怒筒
  YLS-Q10B大鼠尾注固定架
  YLS-Q9B小鼠尾注固定架
  YLS-19A大鼠电动断头器
  YLS-10B小鼠转轮式疲劳仪
  YLS-1A多功能小鼠自主活动记录仪
  YLS-1B多功能大鼠自主活动记录仪
  YLS-1C小动物活动记录仪
  YLS-3E电子压痛仪
  YLS-4C型转棒式疲劳仪
  YLS-3TB跳台记录仪
  YLS-6B智能热板仪
  YLS-7C足趾容积测量仪
  YLS-8A多功能诱咳引喘仪
  YLS-9A生理、手机在线视频播放av药理电子刺激仪
  YLS-12A鼠尾光照测痛仪
  YLS-13A大小鼠抓力测定仪
  YLS-14B小动物血栓生成仪
  YLS-16A小动物骨骼强度仪
  YLS-17B避暗穿梭测试仪
  YLS-18A悬尾测试仪
  YLS-5Q台式超级控温烫伤仪
  YLS-Q1B型小鼠固定筒架
  YLS-Q2B型大鼠固定筒架
  YLS-Q3多功能兔固定架
  YLS-Q4耳肿打耳器
  YLS-Q5 Q6大小鼠灌胃器
产品展示
静脉可视小鼠尾注固定器
YLS-Q9G静脉可视小鼠尾注固定器使用说明书
一、手机在线视频播放av 概述:
我们同行都知道小鼠尾静脉注射是很不容易的事,需要手感、手机在线视频播放av需要练习、手机在线视频播放av需要耐心,实验时,多次打不进去,还会产生一种崩溃的心情。大家一致认为尾注没有任何投机取巧的方法。要想掌握它只有多打、手机在线视频播放av勤练,找感觉,感觉找到了,你就有了自信,这样即便有了自信你也很难做到百分之百的把握,追其原因和难点无非有这样三条,一是动物的保定牢固与否,二是鼠尾血管的充盈程度,三是针入血管的去向问题。如果这三条变成了动物保定牢固、手机在线视频播放av血管十分充盈、手机在线视频播放av能看到针尖进入血管与否,那么尾注还有什么难度吗?其实我们研发的静脉可视尾注固定器就是解决了这样三个问题:一、手机在线视频播放av使用了李氏快装鼠筒,装鼠速度快、手机在线视频播放av保定牢固、手机在线视频播放av鼠位舒适,不会前窜,保证了注射时的稳定:二、手机在线视频播放av使用赶压方式将鼠尾尾根部分血管中的血赶压到鼠尾的后半部分,使其血管充分充盈,方便针头的进入。三、手机在线视频播放av使用特殊的黄光照射鼠尾,使鼠尾的血管显现出来,在可视的情况下使针尖的刺入做到有的放矢,不再是单凭手感的盲打,针是否进入血管,摆动针头看血管是否跟着动就知道针是否在血管中,不再追求那种针进血管中的落空感(其实这种手感,一般短时间内很难体会出来)。这三个难点都解决了,以后尾注将不再是难事了,估计再也没有那么多人在网上讨论尾注的事了,人们将彻底地从尾注的烦恼中解放出来。我们这款尾注固定器就是这样针对这三个难点,经过三年的潜心研究,用新思维、手机在线视频播放av新理念,精心设计制造出来的,这款小型仪器它将用新的原理和新的操作方式让使用者耳目一新。这也将成为鼠尾静脉注射道路上的一个重要里程碑。
主要技术指标:
李氏快装鼠筒可盛装17-40g的小鼠
0.5W LED 黄光灯
五倍放大镜
配带压块释放脚踏开关
电源适配器:输入:AC100-220V   50Hz
                输出:DC  12V 2A
整机尺寸:220*140*125cm
整机重量:1.8Kg
使用方法:
一、手机在线视频播放av 连接
①接通电源:将电源适配器分别连接电源和仪器上,接通后主机面板处有绿色指示灯亮。
②连接脚踏开关:将脚踏开关插头插接在主机箱上。
③连接鼠尾透视灯:将L型鼠尾托板上的灯线插头插在主机箱相应的插座上,按动右侧面上的黄色按钮,黄色灯应亮。
二、手机在线视频播放av装鼠
①快速装鼠筒的使用:
快速装鼠筒一改过去那种小鼠钻入式的装鼠方式,(小鼠钻入式的装鼠方式首次使用还可以,动物在不知的情况下,很容易进入,但动物经过几次后知道进入的不适感觉,再让其进入就较困难了。)快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式,箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内,为了避免鼠在筒内滚转身体,筒内安装了腹部限位块,能有效地限制小鼠身体在筒内翻转,小鼠被拉入筒后,可用前堵头将其堵在里面,前堵头的孔是根据小鼠头骨的生理曲线设计的,能有效地控制鼠的头部,但又不影响正常的呼吸,同时还能让小鼠的前肢找到一个舒适的位置,堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张,正常呼吸为准(通过透明的有机玻璃可观察调整)。
②装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上,鼠筒应侧放(因静脉血管在鼠尾的两侧),定位销进入定位孔,鼠尾通过开口的档板,将其放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里,按动右侧面的黄色按钮,黄色灯亮,观察鼠尾血管是否摆正,再按一下黄色按钮,关闭黄灯,随后将挤压上板右转 90°压下,直到听到清脆的吸合声才可松手,此时鼠尾已被压,按压时应缓慢加力,为让鼠尾根部的血液,有时间挤压到鼠尾的梢部,在下压的同时黄光灯自动点亮,这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮,使血管达到最清楚(环境的亮度变化会影响血管的显现情况,建议在较暗的室内操作,应避开强光直射)。
③注射位置的调整:不管使用多大的小鼠均应从鼠尾部的下1/3处进针,这样逐渐从下向上打可避开打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、手机在线视频播放av大小不同,尾长度也不同,这样就需要调整注射时的位置,其方法是松开左边金属旋钮,拉动L型鼠尾托板至合适位置后旋紧即可。
④放大镜的使用:放大镜是为了能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况(如视力很好也可拆掉不用),放大镜芙薪嵌任恢玫调整,可以适合不同视角的人,放大镜支架的上螺丝松开后可以改变放大镜的角度,松开下螺丝可以改变入视角的角度,支架转动的中轴可以在装鼠时放大镜暂时离开,总之放大镜的合理设计既方便了使用又不会影响到其它操作。
⑤注射:注射使用的针头应在5号针以下,4.5或4号较为合适,过粗的针对血管损伤过大,用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管,不管用什么样的针,重要的一点是能看到血管,同时又能看到针在哪里了,这样注射就很容易了,针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动,这是判断进入血管的最好方法。
确定针进入血管后,踏动脚踏开关,上挤压板上行左转90°打开,这时就可以将药物推入静脉,推入时应缓慢,避免动物出现充血性心衰,每次注射量不超过0.2ml。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上,避免皮下出血或药液回流,影响下次注射,备用鼠筒是为了提高效率轮换使用的。(如果动物样本大也可多购鼠筒)
注意事项:                                                     
    
① 动物在被装筒捉持时会有应激反应,粪尿过多,应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。
②仪器不用时应及时拔掉电源,避免仪器过热损坏。
仪器不可随意拆卸,如有问题请及时与厂家联系。
电话:0531-82958006
 
 
 
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